Syfte
Observera och studera den enzymatiska nedbrytningen av stärkelse med salivär amylas, följa stärkelseuppdelning och glukosbildning över tid.
Material
- 2 provrör
- Vattenbad eller uppvärmningsblock satt på 37°C (kroppstemperatur)
- Utspädd jodlösning
- Benedicts lösning
- 1 % starkelselösning
- Salivär amylasenzym (flytande)
- pH-indikatorpapper
- Stoppklocka eller timer
- Droppe
- Skyddsglasögon
Procedur
- Märk provrör: Märk ett "Kontroll" och det andra "Enzym".
- Kontrolluppsättning: Tillsätt 5 ml starkelselösning + 5 ml vatten till kontrollrör; blanda försiktigt.
- Enzymuppsättning: Tillsätt 5 ml starkelselösning + 5 ml salivär amylas till enzymrör; blanda försiktigt.
- Inkubering: Ställ båda rören i 37°C vattenbad, se till att de är nedsänkta.
- Tidsintervall: Testa vid 0, 5, 10 och 15 minuter.
- Stärkelsetest (jod): Vid varje intervall, tillsätt 2–3 droppar jod till varje rör. Blåsvart indikerar stärkelsenärvaro; bleknande färg visar nedbrytning.
- Glukostest (Benedicts): Tillsätt 5 droppar Benedicts lösning, värma i kokande vattenbad 2–3 minuter. Färgförändring (grön→gul→orange→röd) indikerar ökande glukos.
- pH-övervakning: Använd pH-papper vid varje intervall.
- Registrera observationer: Anteckna färgförändringar och pH för båda rören vid varje tidpunkt.
- Upprepa: Utför försöket flera gånger för konsekvens.
Förväntade resultat
- Kontroll: Jod förblir blåsvart (stärkelse oförändrad); Benedicts förblir blå (ingen glukos); pH stabil.
- Enzym: Jodfärg bleknar över tid (stärkelse nedbruten); Benedicts byter färg (glukos producerad); pH kan sjunka något på grund av syra biprodukter.
Slutsats
Detta försök visar salivär amylas bryter ner stärkelse till glukos. Jod- och Benedicts-test visuellt spårar substratförsvinande och produktbildning, medan pH-övervakning avslöjar tillhöriga kemiska förändringar. Det illustrerar enzym-substratspecifikitet och enzymens roll i kolhydratmatsmältning.
